Die Leistung des Autosamplers ist wie folgt spezifiziert:

Art

Spezifikation

Injektionsmethode

Split-Loop, direkte Injektion oder Trap und Elution

Anzahl der Injektionseinheiten

1

Druckbereich

5 – 151 MPa (50 – 1517 bar, 700 – 22002 psi)

Injektionsvolumen-Bereich

25 µL Probenschleife (Standard)

0,01 µL - 25 µL, in Schritten von minimal 0,01 µL einstellbar

100 µL Probenschleife (erweitert)

0,01 µL - 100 µL, in Schritten von minimal 0,01 µL einstellbar

Hochvolumiges Trappen durch mehrere Ansaug- und Trap-Zyklen: bis zu 500 µL

Genauigkeit des Injektionsvolumens

typisch ± 0,5% mit einem Injektionsvolumen von 5 µL und Wasser

Präzision des Injektionsvolumens

0,05 ‑ 0,20 µL

<5,0%

0,20 ‑ 0,50 µL

<1,5%

0,50 ‑ 2,00 µL

<0,5%

Über 2 µL

<0,25%

Proben-Handling mit minimalem Verlust

Aus 3 µL können mit geeigneten Probenfläschchen 2.5 µL gewonnen werden (siehe Empfehlungen zu Kappen und Verschlüssen von Probengefäßen)

Linearität

r > 0,9999 (Koffein in Wasser)

Waschen der Nadel

Tauchspülen und kontinuierliches Waschen des Nadeläußeren mit 2 unterschiedlichen Nadel-Waschflüssigkeiten.

Spülen der Probenschleife und des Nadelinneren mit starker Waschflüssigkeit aus dem Waschport (SWP). Danach Spülen der Probenschleife und des Nadelinneren mit schwacher Waschflüssigkeit aus der Dosiereinheit (W).

Anzahl der Nadel-Waschflüssigkeiten

2

Dwell-Volumen
(Beitrag des Autosamplers zum Gradientenverzögerungsvolumen des Systems)

Bei einem Probenschleifenvolumen von 25 µL:

In Inject-Position

55 µL

In Bypass-Position

51 nL

Verschleppung

< 0,002% mit Koffein

Barcodeleser

Ja

Automatisierung des Barcodelesens

Barcodelesen:

  • Erkennung von leeren Segmenten

  • Überprüfung von Probenhalter/Mikrotiterplatte

  • Inventarverwaltung

Probenraumthermostatisierung: Temperaturbereich

4 ‑ 40 °C, Kühlung ≥ 23 K unterhalb der Umgebungstemperatur bei < 80% relativer Luftfeuchtigkeit

Temperaturgenauigkeit

-2 °C und +4 °C

Temperaturstabilität

± 1 °C

Probenkapazität

4 Segmente für Probenhalter und Mikrotiterplatten mit SBS-Flächenformat verwendbar; plus Zusatz-Probenfläschchenhalter mit einer Kapazität von (Anzahl Probenfläschchen x AD): 12 x 22,5 mm

Probenfläschchen-Kapazität

  • 54 x 12 mm AD Probenfläschchen

  • 96 x 6 mm AD Probenfläschchen

  • 96 x 7 mm AD Probenfläschchen

  • 96 x 8 mm AD Probenfläschchen

  • 16 x 15 mm AD Probenfläschchen

  • 9 x 22,5 mm AD Probenfläschchen

Mikrotiterplatten-Kapazität

96- und 384-Positionen-Mikrotiterplatten mit SBS-Flächenformat

Minimal erforderliche Probe

2 µL bei 1 µL Injektionsvolumen

USB-Kommunikation

1 USB-Port (USB 2.0, Typ "B")

1 USB-Hub mit 3 Ports (USB 2.0, Typ "A")

E/A-Schnittstelle

2 digitale E/A-Ports (Mini-DIN), jeweils mit einem digitalen Eingang und einem Relaisausgang

System-Interlink

2 System-Interlink-Ports (RJ45-8)

Materialien im analytischen Flussweg

Titan, Keramik, PEEK, MP35N, DLC, Saphir, Fluorpolymere

Hinweis: Informationen dazu, welche Hinterspülflüssigkeit zu verwenden ist, finden Sie in Füllen des Behälters für die Hinterspülflüssigkeit.

Informationen zur chemischen Beständigkeit der Materialien können Sie der technischen Literatur entnehmen.

Materialien im Nadelwasch-Flussweg

PP (Polypropylen), PE, FFPM (Perfluoroelastomer), FFKM, PEEK, PA (Polyamid), PK (Polyketon), TPE (thermoplastische Elastomere)

Materialien im Flussweg der Hinterspülung

Titan, Keramik, PEEK, UHMW-PE, PP, PTFE, Silikon